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ATCC31426淋病奈瑟菌Neisseria gonorrhoeae

一、菌种基础信息中文名称:淋病奈瑟菌拉丁学名:Neisseria gonorrhoeae标准编号:ATCC31426产品形式:冻干菌体(含脱脂乳 - 谷氨酸 - 葡萄糖 - 维生素 B12 复合保护剂,优化苛养菌活性维持,针对耐药菌株特性提升复苏稳定性,复苏率≥75%)安全等级:3 级(强致病性细菌,属法定乙类传染病病原体,主要通过性接触传播,可引

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一、菌种基础信息
  • 中文名称:淋病奈瑟菌

  • 拉丁学名Neisseria gonorrhoeae

  • 标准编号:ATCC31426

  • 产品形式:冻干菌体(含脱脂乳 - 谷氨酸 - 葡萄糖 - 维生素 B12 复合保护剂,优化苛养菌活性维持,针对耐药菌株特性提升复苏稳定性,复苏率≥75%)

  • 安全等级:3 级(强致病性细菌,属法定乙类传染病病原体,主要通过性接触传播,可引发泌尿生殖系统化脓性感染及盆腔炎、败血症等严重并发症,因携带特定耐药基因,临床治疗难度高于普通菌株,需在生物安全三级实验室(BSL-3)或符合防护要求的 BSL-2 + 实验室严格按规范操作)

  • 模式菌株:非模式菌株(是淋病奈瑟菌中多重耐药特性明确的代表性菌株,携带 β- 内酰胺酶基因及外排泵耐药基因,为临床多重耐药淋球菌诊断、抗耐药药物筛选及耐药机制研究的核心参照菌株,尤其适用于分子耐药检测与药敏质控)

  • 分类地位:隶属于奈瑟菌科、奈瑟菌属,为革兰氏阴性双球菌,专性寄生于人类泌尿生殖系统黏膜,无动物宿主,是全球高发的性传播疾病病原体之一;因该菌株对青霉素、四环素、氟喹诺酮类药物均表现耐药,且对部分头孢类药物敏感性下降,成为研究淋球菌耐药进化与临床治疗策略调整的重要材料。

二、核心生物学特性
  1. 形态特征

  • 菌落形态:在巧克力琼脂培养基(含 X 因子)上 35-37℃(含 5% CO₂)培养 24-48h,菌落呈灰白色半透明,直径 0.4-0.8mm(较 ATCC19424 略小,耐药菌株生长速率稍慢),表面光滑、凸起,边缘整齐,质地黏稠,接种环挑取时呈明显拉丝状(关键鉴别特征);在含头孢曲松的选择性培养基上可缓慢生长(表现出对头孢类药物的低水平耐药,与敏感菌株的抑制生长形成差异);

  • 菌体形态:典型革兰氏阴性双球菌,大小 0.6-0.8μm,呈 “咖啡豆” 状成对排列(凹面相对),更易观察到胞外黏液层(与耐药相关的外膜蛋白表达增强);无芽孢,无鞭毛,Ⅰ 型菌毛完整(黏附能力与敏感菌株无显著差异),部分菌体可观察到荚膜增厚;革兰氏染色呈红色双球菌,美蓝染色可见中性粒细胞胞内寄生特性,电镜下外膜蛋白(PorB、Opa)分布密度高于普通敏感菌株,脂多糖(内毒素)结构无显著变异。

  1. 生理特性

  • 苛养菌特性:专性需氧,依赖 5%-10% CO₂环境生长,最适生长温度 35-37℃(低于 30℃或高于 38.5℃生长受抑制更明显),生长 pH 范围 6.5-7.5,营养需求苛刻,需 X 因子(血红素衍生物),无需 V 因子,可与脑膜炎奈瑟菌明确区分;

  • 生化特性典型:氧化酶试验阳性(10 秒内快速呈深蓝色),触酶试验阳性,仅氧化葡萄糖产酸(不发酵麦芽糖、乳糖、蔗糖,与脑膜炎奈瑟菌差异显著),硝酸盐还原试验阴性,不产生吲哚;与 ATCC19424 相比,该菌株在含低浓度抗生素(如青霉素 5μg/mL)的培养基中仍可缓慢生长,生化反应速率无显著差异;

  • 致病性与耐药性(菌株核心特性)

  • 致病性:通过 Ⅰ 型菌毛黏附泌尿生殖道上皮细胞,分泌 Opa 蛋白穿透黏膜屏障,释放内毒素引发化脓性炎症,临床感染症状与敏感菌株一致(男性尿道炎、女性宫颈炎等),但因耐药导致感染持续时间更长,并发症发生率更高;

  • 耐药特性:明确携带多重耐药基因—— 含青霉素酶基因(blaTEM,导致青霉素耐药)、四环素耐药基因(tetM,导致四环素耐药)、氟喹诺酮耐药基因(gyrA突变,导致环丙沙星耐药),同时携带 mtrR 外排泵基因高表达突变(增强对头孢曲松、大观霉素的耐药性);药敏试验结果显示:对青霉素、四环素、环丙沙星耐药,对头孢曲松中介(MIC 值 0.125-0.25μg/mL,高于敏感菌株的≤0.06μg/mL),对大观霉素敏感;

  • 抗原特性:菌毛抗原与外膜蛋白抗原(PorB、Opa)变异度高于普通菌株,更易逃避宿主免疫应答,导致反复感染风险增加。

三、培养与保存条件
  • 培养条件

  • 推荐使用巧克力琼脂培养基或耐药淋球菌专用选择性培养基(添加青霉素 5μg/mL、四环素 2μg/mL,筛选耐药菌落),35-37℃(含 5% CO₂)培养 30-48h(耐药菌株生长周期较敏感菌株长 6-12h,需延长培养时间);

  • 液体培养选用 GC 液体培养基(添加 X 因子、葡萄糖及 0.1% 酵母提取物,优化耐药菌株营养供给),35-37℃(含 5% CO₂)振荡培养(转速 100-120rpm,低速避免菌体破碎)40-48h,菌体浓度可达 10⁷-10⁸CFU/mL,菌液呈轻微浑浊状(因耐药菌株聚集成对能力更强,浑浊度略低于敏感菌株);

  • 关键培养要点:培养基需新鲜制备(X 因子与酵母提取物易降解,影响耐药菌株生长),培养环境湿度控制在 75%-85%(高于普通菌株需求,防止菌落干裂),避免光照(紫外线易导致耐药基因稳定性下降),接种量需比敏感菌株增加 20%(确保复苏效率)。

  • 活化步骤

  • 在 BSL-3 实验室生物安全柜内操作,无菌环境下开启冻干管,用 0.5-1mL 无菌 GC 液体培养基(预热至 37℃,含 5% CO₂平衡 30 分钟)充分溶解菌体;

  • 将菌液全部涂布于耐药淋球菌专用选择性培养基,35-37℃(含 5% CO₂)培养 36h,挑取单个典型半透明菌落(优先选择拉丝状明显、在选择性培养基上生长良好的菌落),转接至新鲜巧克力琼脂斜面,35-37℃(含 5% CO₂)培养 24h,获得高活性纯培养物(操作时需穿戴正压防护服,严格控制气溶胶产生,耐药菌株传播风险与敏感菌株一致,但治疗难度更高)。

  • 保存方法

  • 未启封冻干菌体:-20℃以下密封避光保存,有效期 2 年(因耐药基因易发生突变,需避免反复冻融,建议分装置于 - 80℃保存以延长稳定性);

  • 复苏后斜面菌种:4℃(含 5% CO₂)密封保存,每 3 天继代一次,有效期不超过 5 天(耐药菌株继代过程中耐药基因易丢失,需缩短继代周期并每次验证药敏特性);

  • 长期保存:采用液氮冷冻保存(将对数生长期菌体与 15% 甘油 - 5% 葡萄糖 - 0.5% 维生素 C 混合液分装,维生素 C 可保护耐药基因稳定性),投入液氮后有效期可达 1-2 年,解冻时需 37℃水浴快速融化,立即接种至选择性培养基,避免耐药表型退化。

四、主要应用领域
  1. 临床耐药诊断与质控

  • 作为临床微生物实验室多重耐药淋球菌检测的标准参照菌株,用于验证耐药检测方法(如 PCR 耐药基因检测、质谱耐药表型分析、肉汤稀释法 MIC 测定)的准确性,评估耐药诊断试剂(如 β- 内酰胺酶检测试纸、耐药基因芯片)的灵敏度与特异性;

  • 用于临床分离株的耐药比对分析,辅助确诊多重耐药淋球菌感染病例,区分普通敏感菌株与耐药菌株,为临床选择头孢曲松联合大观霉素等治疗方案提供依据,符合 CLSI M100《抗微生物药物敏感性试验执行标准》中耐药淋球菌质控要求;

  • 作为抗耐药淋球菌药物药敏试验的质控菌株,校准头孢曲松、大观霉素、阿奇霉素等药物的 MIC 判定标准,监控临床菌株耐药趋势变化(如头孢曲松敏感性进一步下降)。

  1. 抗耐药药物研发与耐药机制研究

  • 用于体外抗耐药淋球菌药物筛选,评估新型抗生素(如头孢他啶 - 阿维巴坦复方制剂、新型大环内酯类药物)对多重耐药菌株的抑制效果,筛选能破解 β- 内酰胺酶与外排泵耐药机制的化合物;

  • 作为耐药机制研究的模型菌株,探mtrR外排泵基因表达调控、gyrA基因突变对氟喹诺酮类药物结合能力的影响,以及耐药基因水平转移机制(如质粒介导tetM基因传播),为耐药逆转剂(如外排泵抑制剂)研发提供靶点;

  • 用于抗耐药药物作用机制验证,通过测定药物对菌株外膜蛋白合成、β- 内酰胺酶活性的影响,明确药物是否针对耐药靶点起效。

  1. 分子流行病学与公共卫生研究

  • 作为分子流行病学研究的参照菌株,通过 MLST(多位点序列分型)、PorB 基因分型、耐药基因测序等方法,分析全球不同地区多重耐药淋球菌的遗传进化关系,追溯耐药菌株传播路径(如跨区域流行菌株的关联);

  • 用于公共卫生防控策略研究,评估针对耐药菌株的干预措施(如加强性传播疾病筛查、推广敏感药物联合治疗)对耐药菌株流行率的影响,为制定区域耐药防控方案提供数据支撑;

  • 用于耐药基因数据库构建,其耐药基因序列可作为临床分子检测的标准参考序列,提升耐药检测结果的准确性与可比性。

  1. 教学与实验室能力验证

  • 用于高等医学院校医学微生物学(耐药微生物方向)教学实验(需严格防护),演示多重耐药苛养菌培养技术、耐药菌株药敏试验方法、耐药基因检测原理,帮助学生理解淋球菌耐药进化与临床治疗挑战;

  • 作为临床实验室能力验证(PT)的样本菌株,评估实验室对多重耐药淋球菌的检测与药敏能力(尤其针对低水平头孢曲松耐药的识别),确保临床对耐药菌株的及时诊断与正确治疗。

五、质量与安全保障
  • 质量检测

  • 纯度检测:涂布巧克力琼脂、耐药选择性培养基及麦康凯培养基(确认不生长),确保无细菌、真菌污染,菌落形态均一,革兰氏染色仅见阴性双球菌,无胞外杂菌;

  • 活性检测:平板计数法测定活菌数,确保≥10⁷CFU / 支;35-37℃(含 5% CO₂)培养 48h 后,耐药选择性培养基上菌落直径≥0.4mm,菌体浓度≥10⁷CFU/mL;

  • 特性验证:

  • 生化验证:API NH 生化鉴定卡确认氧化酶阳性、仅氧化葡萄糖产酸;

  • 耐药特性验证:采用 CLSI 肉汤稀释法检测药敏表型,确认对青霉素(MIC≥8μg/mL)、四环素(MIC≥16μg/mL)、环丙沙星(MIC≥4μg/mL)耐药,对头孢曲松中介(MIC 0.125-0.25μg/mL);

  • 分子验证:PCR 检测确blaTEMtetMgyrA突变基因阳性,16S rRNA 基因测序确认分类地位;

  • 安全性检测:内毒素检测(鲎试剂法≤5EU/mL),确认无外源性毒素污染;

  • 随货附带完整 COA(分析报告),含详细耐药基因序列与药敏谱数据,质量可追溯,需提供国家认可的生物安全证书与高致病性耐药微生物运输许可。

  • 安全操作规范

  • 操作需在 BSL-3 实验室或 BSL-2 + 实验室(配备生物安全柜、正压防护服、负压通风系统、高效空气过滤器)进行,实验人员需经高致病性耐药微生物操作专项培训并考核合格,全程穿戴正压防护服、护目镜、N95 口罩及双层无菌手套;

  • 实验废弃物(含菌培养基、耗材、防护用品)需经 121℃高压蒸汽灭菌 90min(耐药菌株细胞壁结构更稳定,延长灭菌时间确保彻底灭活)后,按医疗废弃物规范处理;

  • 若发生菌液泄漏,立即启动应急方案:封闭污染区域,用 2000mg/L 含氯消毒剂与 0.5% 过氧乙酸混合液覆盖污染表面并作用 90 分钟,通风 2 小时以上,暴露人员需立即进行医学评估,服用头孢曲松 + 大观霉素联合预防性药物,并随访观察 14 天;

  • 收货后 24 小时内,若发现安瓿管破损、菌体变色(非淡黄色)、复苏后在耐药选择性培养基上不生长或药敏特性与 COA 报告不符,需在生物安全柜内妥善处理破损品,按高致病性耐药微生物运输规范联系售后,严禁私自处置或丢弃。



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